Оборудование для гистологии. Этапы гистологической пробоподготовки

Оборудование для гистологии. Этапы гистологической пробоподготовки

Пробоподготовка в гистологии и морфологии играет очень важную роль: от неё зависит точность микроскопических исследований. Для получения качественных препаратов применяется специальное (микротом, гистопроцессор, криостат и пр.) и общелабораторное (микроскоп, весы, водяная баня и др.) оборудование. В статье рассмотрим этапы гистологической пробоподготовки, требования к её проведению и применяемое оборудование.

Содержание:

От чего зависит качество гистологической пробоподготовки

Гистология применяется как в клинической (морфологической) диагностике, так и в фундаментальных исследованиях. Качество микроскопических исследований напрямую зависит от правильно организованной и проведенной пробоподготовки гистологических препаратов. В свою очередь, качество гистологических препаратов зависит от:

  • Соблюдения технологии подготовки;
  • Качества специального оборудования;
  • Профессионализма и опыта лаборантов.

Получение информативных гистологических препаратов может осложняться артефактами, мешающими точной интерпретации результатов или делающими её невозможной. Поэтому особенную важность приобретает соблюдение очередности и правил пробоподготовки и применяемое для этого оборудование.

Оборудование для морфологической лаборатории

В состав морфологической лаборатории входят специальные помещения для различных этапов пробоподготовки (вырезки, проводки и др.), микроскопических исследований, при необходимости – работы с животными (виварии, операционные и т. д.), культурами клеток (асептические боксы).

Помещения обязательно должны оснащаться приточновытяжной вентиляцией. Необходимо учитывать тот факт, что при работе с гистологическими образцами приходится иметь дело с химическими и легковоспламеняющимися веществами: кислоты, спирты, летучие токсичные соединения, парафин и т. д. Поэтому нужно соблюдать строгие правила безопасности. Также осторожности требует работа с режущими инструментами (микротомные лезвия и проч.). Для защиты лаборанты должны использовать специальные средства индивидуальной защиты (перчатки, маски и т. д.).

Повышению эффективности и стандартизации процессов в морфологической лаборатории служит их автоматизация с помощью современного оборудования и программного обеспечения. Она позволяет упростить ведение документооборота и сам процесс пробоподготовки, сократить время на него и избежать ошибок из-за человеческого фактора.

Специальное оборудование для гистологии

Оборудование для морфологической (шире – гистологической) лаборатории делится на два типа: специальное и общего назначения. К специальному относятся приборы и аппараты, без которых процесс пробоподготовки невозможен: криостат, микротом, цитологический процессор и т. д. Также к специальному оборудованию относятся доски и столы для вырезки материала, применение которых позволяет получать образцы тканей определенной формы и толщины.

Для маркировки образцов применяют специальные принтеры (для предметных стекол и гистологических кассет). Автоматическая маркировка делает более точным обозначение материалов для хранения и использования, а устойчивые химические чернила позволяют избежать стирания надписей, упростить их чтение. Маркировка штрих-кодами подходит для применения со сканирующими микроскопами.

Гистологические процессоры позволяют автоматизировать процесс проводки образцов, уменьшить контакт лаборанта с реагентами. Производительность гистопроцессоров увеличивает число исследований, а значит и экономическую эффективность лаборатории.

Проводка биологического материала – инкубация его в спиртах и органических растворителях для полного прекращения всех химических реакций в образце, что позволяет в дальнейшем делать достаточно тонкие срезы уплотненных образцов, оптимальных для микроскопии.

К специальному оборудованию относятся заливочные станции, позволяющие проводить заливку гистологических образцов в парафин или другой фиксатор. Они могут быть как полностью, так и частично автомазированными.

Для изготовления срезов тканей применяются микротомы, которые делятся на санные и ротационные, автоматические и полуавтоматические. Для автоматической окраски гистологических срезов используют специальные приборы – стейнеры. Также автоматическое окрашивание и заключение гистологических срезов можно производить в едином аппаратном комплексе.

 Взятие биологического материала должно осуществляться острыми режущими инструментами во избежание его деформации. Необходимо учитывать особенности органа, из которого взят образец. При наличии патологического процесса нужно, чтобы в материале были и измененные, и неизмененные участки ткани.

Для предотвращения загрязнения гистологических образцов все операции с ними проводят в ламинарном шкафу или боксе антибактериальной среды, которые также относятся к специальному гистологическому оборудованию.

Общелабораторное оборудование

К общелабораторному оборудованию относится, в первую очередь, микроскоп – оптический прибор для изучения гистологических образцов с увеличением.

В морфологических лабораториях используются различные типы микроскопов: световые, цифровые, люминесцентные и т. д. Они имеют разную разрешающую способность, увеличение и комплектацию, включая объективы (ахроматические или планахроматические), окуляры, конденсоры и т. д.

Микроскоп состоит из механической и оптической части:

  • Механическая – штатив, тубус, револьверное устройство, предметный столик, механизмы коаксиальной фокусировки и перемещения предметного столика;
  • Оптическая – объективы, окуляры, осветительная система.

Исследование гистологических препаратов, в зависимости от целей, возможно в светлом и темном поле, методом масляной иммерсии, люминесценции и т. д.

Для изучения объектов, помещенных в лабораторную посуду, применяются инвертированные микроскопы, в которых образец находится над объективом. Для сканирования гистологических препаратов и архивирования полученных данных применяют сканирующие микроскопы.

К лабораторному оборудованию общего назначения относятся также: pH-метр, весы, автоклав, криокамера, автоматические пипетки, шейкер, термостат, водяная баня, центрифуга, аквадистиллятор, вытяжной шкаф и проч.

Основные этапы приготовления гистологических препаратов

Основными этапами пробоподготовки в морфологической (гистологической) лаборатории являются:

  • Взятие биологического материала;
  • Промывка и фиксация материала;
  • Проводка и заливка образцов;
  • Создание парафиновых блоков;
  • Приготовление срезов;
  • Окраска и заключение.

Взятие биологического материала должно осуществляться острыми режущими инструментами во избежание его деформации. Необходимо учитывать особенности органа, из которого взят образец. При наличии патологического процесса нужно, чтобы в материале были и измененные, и неизмененные участки ткани.

Вырезка образца – важный этап гистологической пробоподготовки.

Сразу после взятия образец должен быть промаркирован. Маркировка должна быть разборчивой и четкой. Она наносится влагостойкими чернилами. Избежать путаницы и потери гистологических образцов помогает система штрихкодирования (уникальный штрихкод образца наносится на этикетку емкости с фиксатором, гистологические кассеты и предметные стекла, для чего применяются специальные принтеры).

Для маркировки образцов применяют специальные принтеры (для предметных стекол и гистологических кассет). Автоматическая маркировка делает более точным обозначение материалов для хранения и использования, а устойчивые химические чернила позволяют избежать стирания надписей, упростить их чтение. Маркировка штрих-кодами подходит для применения со сканирующими микроскопами.

Образец взвешивается и промывается в физиологическом растворе от крови, желчи, слизи и т. п. Необходимо следить за тем, чтобы в ходе манипуляций не происходило пересушивание ткани, иначе она утратит свою ценность в качестве материала исследования. К артефактам образцов относятся также механическая деформация, размозжение и разрывы.

Следующий этап пробоподготовки гистологических образцов – фиксация их для сохранения прижизненной структуры клеток. Вырезанные, промытые образцы помещаются в емкости из прозрачного пластика или стекла с плотной широкой крышкой. Не допускается использование металлической лабораторной посуды.

Существует два основных метода фиксации гистологических образцов:

  • Химический – помещение их в раствор фиксатора;
  • Термический – нагревание биологических образцов.

Оба метода имеют свои достоинства и недостатки. Главное условие удачной фиксации образцов – соблюдение технологии. В качестве жидкости для химической фиксации применят парафин, целлоидин, желатин и т.п. или синтетические смолы.

Окончательное формирование гистологических образцов происходит после их фиксации, когда они становятся плотнее, а работа с ними проще. Формирование образца заключается в вырезке фрагмента нужной формы и размера, отсечении лишних участков и подравнивании краев. Вырезка образцов должна происходить на чистой поверхности и чистыми инструментами.

Проводка биологического материала – инкубация его в спиртах и  органических растворителях для полного прекращения всех химических реакций в образце, что позволяет в дальнейшем делать достаточно тонкие срезы уплотненных образцов, оптимальных для микроскопии.

Проводка может производиться вручную или с применением гистологических процессоров, что значительно повышает скорость и качество работы и увеличивает производительность морфологической лаборатории. Качество проводки напрямую зависит от соблюдения технологии, рекомендаций производителя гистопроцессора и регулярной смены реагентов.

Для заливки гистологических образцов в парафин применяются заливочные станции – оборудование, имеющее подогреваемую рабочую поверхность, дозатор для парафина, охлаждающую поверхность. Станции заливки могут быть полностью автоматическими или полуавтоматическими. Их использование позволяет повысить эффективность работы лаборатории по сравнению с ручной заливкой образцов.

Окончательная заливка в парафин производится с помощью диспенсера, где парафин поддерживается нагретым до +56–58 °С. Диспенсер имеет нагревательную и охлаждающую платформу.

После извлечения гистологических кассет с образцами тканей, пропитанными парафином, из процессора, образцы ориентируются с помощью пинцета в нагретые формочки с горячим парафином; их накрывают и плотно прижимают гистологической кассетой, долив сверху парафин до краев кассеты, и помещают на охлаждающую плату или хладагент, где происходит застывание парафинового блока. Ориентирование образов в кассетах производится в соответствии с их особенностями и целями исследования.

Полученному парафиновому блоку придают форму усеченной пирамиды с основанием в форме прямоугольника или трапеции. Его основание подплавляют и прикрепляют на промаркированной колодке.

Современный прибор для вырезки гистологических образцов – микротом. Он состоит из следующих основных частей: корпус, держатель объекта, держатель микротомного ножа, подающий механизм.

Держатель объекта позволяет прочно зафиксировать колодку с блоком, а держатель ножа – лезвие микротомного ножа под нужным углом. Угол наклона ножа регулируется в зависимости от типа и характеристик объекта. Перемещение образца на нужное расстояние относительно микротомного ножа обеспечивает подающий механизм. В ротационных микротомах, в отличие от санных, объект смещается относительно неподвижного микротомного ножа. Подающий механизм позволяет микротому производить последовательные (серийные) срезы заданной толщины. Применение автоматических микротомов уменьшает роль человека, упрощая создание срезов и делая их точнее и тоньше. Однако даже в этом случае участие лаборанта необходимо.

Ультратом – прибор, с помощью которого можно производить срезы толщиной менее 1 мкм: полутонкие и ультратонкие – для трансмиссионного электронно-микроскопического исследования.

Получение замороженных срезов тканей возможно с помощью приборов, совмещающих в себе микротом и криостат – микротом-криостатов.

Окраска гистологических срезов позволяет лучше визуализировать структуру тканей и клеток. Окрашиваемость зависит как от структуры ткани, так и от свойств красителя. Парафиновые срезы не воспринимают красители, перед окрашиванием осуществляется их депарафинизация с помощью инкубации среза в течение 10–15 минут в жидкости, растворяющей парафин, например о-ксилоле, после чего срезы регидратируют, проводя через 2–3 смены этилового спирта, и помещают в дистиллированную воду. После этого срезы можно окрашивать. Распространенная методика окрашивания – гематоксилином и эозином. Также можно применять специфические методы: по Маллори, Массону, Ван Гизону, Перлсу и др.

Окраска гистологических срезов позволяет лучше визуализировать структуру тканей и клеток.

Для длительного сохранения свойств гистологического среза его заключают под покровное стекло: на срез наносят монтирующую срезу и заключают под стекло таким образом, чтобы все пространство между предметным и покровным стеклом было заполнено монтирующей средой и не было пузырьков воздуха. Монтирующие среды для гистологических срезов должны быть прозрачными, с коэффициентом преломления близким к коэффициенту преломления стекла и не взаимодействовать с красителями (канадский бальзам и синтетические среды –полистирол, акриловые смолы и др.). Применение аппаратов для заключения препаратов под покровное стекло значительно повышает скорость и качество работы.

Распространенная методика окрашивания – гематоксилином и эозином. Также можно применять специфические методы: по Маллори, Массону, Ван Гизону, Перлсу и др.

Заключенный под стекло окрашенный и промаркированный срез называется гистологическим препаратом. Гистологические препараты оставляют горизонтально до полного затвердевания монтирующей среды, после чего их можно использовать для микроскопических исследований.

Заключение

В гистологии и морфологии огромное значение имеет качество подготовки препаратов для исследования. Соблюдение технологии этапов пробоподготовки и применение качественных инструментов и современного оборудования, в том числе автоматизированного, позволяет добиться высокой ценности препаратов. Автоматизация этапов пробоподготовки помогает избежать ошибок идентификации образцов и повысить производительность морфологической лаборатории.



Список литературы:

  1. Гистологический практикум: учебное пособие / В.В. Иванова [и др.]. – Томск: Изд-во СибГМУ, 2023. – 81 с.; авторы: В.В. Иванова, И.В. Мильто, А.Н. Дзюман, О.Н. Серебрякова, Е.Д. Порохова, И.В. Суходоло; рецензент: М.В. Завьялова – доктор медицинских наук, профессор, зав. кафедрой патологической анатомии ФГБОУ ВО СибГМУ Минздрава России, г. Томск
  2. «Краткий курс гистологической техники», учебно-методологическое пособие под научной редакцией к. м. н., доцента Р. В. Деева, авторы: Мавликеев М. О., Архипова С. С., Чернова О. Н., Титова А. А., Певнев Г. О., Шафигуллина А. К., Киясов А. П., Казанский университет, Казань, 2020 г.

Дата публикации:

Вас заинтересует
Высокопроизводительный гистопроцессор MAGNUS
MAGNUS – гистологический процессор с автоматической двойной ретортой: параллельное выполнение разных этапов пробоподготовки, загрузка – до 300/600 стандартных кассет или до 24 SuperMega кассет, прямой забор реагентов из коммерческих контейнеров.
 
MAGNUS – гистологический процессор с автоматической двойной ретортой: параллельное выполнение разных этапов пробоподготовки, загрузка – до 300/600 стандартных кассет или до 24 SuperMega кассет, прямой забор реагентов из коммерческих контейнеров.
В избранное
В сравнение
Гистологический процессор LOGOS
Гистопроцессор LOGOS реализует гибридную технологию (нагрев и микроволны) и обеспечивает загрузку до 210/300 кассет за цикл. Закрытая система и сильная вытяжка повышают безопасность лаборантов.
 
Гистопроцессор LOGOS реализует гибридную технологию (нагрев и микроволны) и обеспечивает загрузку до 210/300 кассет за цикл. Закрытая система и сильная вытяжка повышают безопасность лаборантов.
В избранное
В сравнение
Автомат для окраски мазков АФОМК-16-КОМБО
АФОМК-16-КОМБО – автомат для окраски мазков в гистологии, цитологии, гематологии, паразитологии и т. д. Имеет 16 станций (1 для сушки, 1 для промывки), управляется с цветного сенсорного экрана, в памяти содержится до 32 программ по различным методам окрашивания, можно загружать программы через SD-карту.
 
АФОМК-16-КОМБО – автомат для окраски мазков в гистологии, цитологии, гематологии, паразитологии и т. д. Имеет 16 станций (1 для сушки, 1 для промывки), управляется с цветного сенсорного экрана, в памяти содержится до 32 программ по различным методам окрашивания, можно загружать программы через SD-карту.
В избранное
В сравнение
Аппарат Leica CV5030 для заключения препаратов под покровное стекло
Leica CV5030 – аппарат для заключения гистологических препаратов под покровное стекло производительностью 400 стёкол в час с возможностью выбора сухого или влажного заключения, системой вентиляции и угольным фильтром. Сохраняет в памяти до 4 программ, совместим с аппаратом Leica ST5010 AXL, подходит для интеграции в станции окрашивания или заключения.
 
Leica CV5030 – аппарат для заключения гистологических препаратов под покровное стекло производительностью 400 стёкол в час с возможностью выбора сухого или влажного заключения, системой вентиляции и угольным фильтром. Сохраняет в памяти до 4 программ, совместим с аппаратом Leica ST5010 AXL, подходит для интеграции в станции окрашивания или заключения.
В избранное
В сравнение
Криостат Leica CM1950
Leica CM1950 – напольный криостат с усовершенствованной системой резки и охлаждения. Может поставляться в разных комплектациях. Функция локального охлаждения ножа обеспечивает ровный срез и предотвращает сворачивание образцов. УФ-дезинфекция и защитное покрытие продлевают срок эксплуатации.
 
Leica CM1950 – напольный криостат с усовершенствованной системой резки и охлаждения. Может поставляться в разных комплектациях. Функция локального охлаждения ножа обеспечивает ровный срез и предотвращает сворачивание образцов. УФ-дезинфекция и защитное покрытие продлевают срок эксплуатации.
В избранное
В сравнение